产品货号:
WE0200
中文名称:
植物RNA提取试剂盒(含DNase I)
英文名称:
RNAtiqu Plant RNA Extraction Kit(DNase I)
产品规格:
50T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价
本试剂盒用于从各种植物中提取纯化高品质总RNA,也适用于真菌菌丝RNA的提取。独特的分离柱,用于匀质化和过滤高粘度的植物或真菌裂解物,同时采用硅基质膜吸附RNA进行纯化,使多聚糖等各种污染物通过洗涤被有效去除,经洗脱的RNA可直接用于各种下游实验。由本试剂盒提取RNA分子量大于200碱基,纯度高,几乎无DNA残留。如果是对微量DNA非常敏感的RNA实验,残留的DNA可利用无RNase的DNase在柱上进行消化去除。提取的RNA可用于Northern Blot、Dot Blot、RT-PCR和体外翻译等实验。
组分 | 规格 |
DNase I | 1000U |
10×Reaction Buffer | 1000μL |
Buffer RL | 35mL |
Buffer RLC | 35mL |
Buffer RW1 | 40mL |
Buffer RW2(浓缩液) | 11mL |
RNase-Free Water | 10mL |
吸附柱FL及收集管 | 50套 |
吸附柱RM及收集管 | 50套 |
RNase-Free离心管(1.5mL) | 50个 |
保存条件:DNase I及10×Reaction Buffer -20℃保存,其它组分室温(15~30℃)。
β-巯基乙醇、无水乙醇(新开封或提取RNA专用)。
- 预防RNase污染,应注意以下几方面:
- 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
- 配制溶液应使用无RNase的水。
- 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
- 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
- 预防RNase污染,应注意以下几方面:
- 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
- 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5M NaOH中浸泡10分钟,用水彻底冲洗后高压灭菌。
- 配制溶液应使用无RNase的水。
- 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
- 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
- 提取的样品避免反复冻融,否则影响RNA提取的量和质量。
- Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇,1mL Buffer RL加10μL β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL室温可保存1个月。Buffer RLC使用时不需加β-巯基乙醇。
- 第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。
- Buffer RL和Buffer RLC如果产生沉淀,请加热使其溶解后室温放置。
- 所有离心步骤均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。
- 50~100mg植物组织在液氮中迅速研磨成粉末,加入600μL Buffer RL(使用前检查是否加入β-巯基乙醇)或Buffer RLC。涡旋振荡使其充分裂解。
注意:- Buffer RL主要成分为异硫氰酸胍,适用于大多数植物组织的裂解。但有些植物组织(如玉米的胚乳),由于次级代谢产物较特殊,异硫氰酸胍使样品产生沉淀,导致RNA提取效果不佳,此时可加入Buffer RLC替代Buffer RL。
- 56℃孵育1~3分钟有助于组织的裂解,但是淀粉含量高的植物不要进行高温孵育。
- Buffer RL主要成分为异硫氰酸胍,适用于大多数植物组织的裂解。但有些植物组织(如玉米的胚乳),由于次级代谢产物较特殊,异硫氰酸胍使样品产生沉淀,导致RNA提取效果不佳,此时可加入Buffer RLC替代Buffer RL。
- 将步骤1所得全部液体转移至已装入收集管的吸附柱FL中,12000rpm(~13400×g)离心2分钟,将收集管中的上清液转移到一个新的离心管(自备)中。
注意:- 在吸取液体时可以将枪头尖端剪掉,便于取样。
- 吸附柱FL可以除去大部分的碎片,但仍会有小部分流出,离心后会在收集管内形成沉淀,在进行下一步时注意避免吸到沉淀。
- 在吸取液体时可以将枪头尖端剪掉,便于取样。
- 在步骤2所得干净的裂解液中加入0.5倍体积的无水乙醇,迅速混匀。
注意:加入乙醇后可能会产生沉淀,但不影响后续试验。 - 将上步得到的溶液转移到已装入收集管的吸附柱RM中,若一次不能将全部溶液加入吸附柱中,请分两次转入;12000rpm离心15秒,弃掉废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 向吸附柱中加入350μL Buffer RW1,12000rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 配制DNase I混合液:取52μL RNase-Free Water,向其中加入8μL 10×Reaction Buffer和20μL DNase I(1U/μL),混匀,配制成终体积为80μL的反应液。
- 向吸附柱中直接加入80μL DNase I混合液,20~30℃孵育15分钟。
- 向吸附柱中加入350μL Buffer RW1,12000rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 向吸附柱中加入500μL Buffer RW2(使用前检查是否加入无水乙醇),12000rpm离心15秒,弃废液。
- 重复步骤9。
- 将吸附柱放回收集管中,12000rpm离心1分钟,将吸附柱置于室温数分钟,以彻底晾干吸附柱中的无水乙醇。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。 - 将吸附柱装入新的离心管中,向吸附膜的中间加入30~50μL RNase-Free Water,室温放置1分钟,12000rpm离心1分钟,得到的RNA溶液保存在-70℃,防止降解。
注意:- RNase-Free Water体积不应小于30μL,体积过小影响回收率。
- 如果要提高RNA的产量,可用30~50μL新的RNase-Free Water重复步骤12。
- 如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤12。
- RNase-Free Water体积不应小于30μL,体积过小影响回收率。
相关搜索:植物RNA提取试剂盒(含DNase I),植物RNA提取试剂盒,RNAtiqu Plant RNA Extraction Kit(DNase I)